给免激光转盘共聚焦“戴上眼镜”:牛津团队在 AUROX Clarity 上实现无传感器自适应光学

2026_10-22

全文约 2150 字,预计阅读约 6 分钟。

导语

在厚样品深处做荧光成像时,常见的问题是越往里图像越“糊”。原因之一是像差(aberration):样品内部各处折射率不同,浸油、盖玻片和组织之间也存在折射率差异,光波穿过后波前发生扭曲,焦点不再是一个清晰的小点。天文望远镜用“自适应光学”(adaptive optics,AO)来抵消大气扰动,显微镜也可以借用同样的思路。

2022 年发表在 Journal of Microscopy 上的一项研究中,牛津大学工程科学系 Martin Booth 团队联合牛津大学生物化学系和日本大阪大学,把一套基于可变形镜的 AO 模块接入 AUROX Clarity 免激光转盘共聚焦光路,并为这种成像方式设计了专门的图像质量指标。作者在论文中指出,此前这类无传感器 AO 尚未在“相关盘”(correlation disk)型显微镜上实现过。

研究背景:Clarity 是怎样得到光学切片的

Clarity 的成像原理与常见的针孔阵列转盘不同。作者在文中做了说明:LED 光照到刻有平行条纹的旋转盘上,一部分光被条纹反射掉,另一部分穿过条纹,在样品焦面上形成条纹状照明;焦面以外的照明则是均匀的。样品发出的荧光再成像回盘面,焦面附近的信号主要穿过条纹(透射像 I_T),焦外的模糊光主要被盘面反射(反射像 I_R)。两路像同时落在同一台相机的上下两半,相减就得到光学切片图像,相加则得到普通宽场图像。

盘上有三种不同间距的条纹,对应低、中、高三档切片强度。作者引用厂家参数:三档的光学切片厚度分别约为 2.5 µm、1.7 µm 和 0.9 µm。条纹越细,切片越薄,但信号也越弱,这与点扫描共聚焦中调节针孔大小的取舍类似。

作者分析,像差会同时作用于照明和检测两条光路:照到样品里的条纹变模糊,透射像和反射像之间的差别变小,切片图像的信号和分辨率(尤其轴向)都会下降。

研究方法:插入可变形镜,优化“中频”信息

Hussain 2022 Figure 2
图 1 实验系统示意。显微镜主体(Olympus IX71)与 Clarity 模块之间插入了一段由两块 300 mm 透镜组成的 4f 中继光路,可变形镜(Mirao 52e)位于与物镜光瞳共轭的位置;LED 光源和相机连接在 Clarity 模块上。来源:原文 Figure 2。

正常使用时,Clarity 直接装在显微镜侧口。为了插入 AO,作者把模块与 Olympus IX71 机身分开,中间加了一段 1:1 的 4f 中继光路,把可变形镜放在与物镜光瞳共轭的平面上。其余配置包括:Olympus 60×/1.4 NA 油镜、PI 压电 Z 台、Photometrics Prime BSI sCMOS 相机,以及 CoolLED pE-300ultra LED 光源。

“无传感器”指不用专门的波前传感器测量像差,而是采用逐个试探的办法:对某一种像差模式(用 Zernike 多项式描述,如像散、彗差、球差),让可变形镜依次施加几种不同幅度的预设像差,各拍一张图,计算图像质量指标,再用高斯函数拟合出指标峰值的位置,作为该模式的校正量。逐个模式重复,即完成一轮校正。

这项工作的关键在于质量指标的设计。作者的分析是:Clarity 的成像依赖条纹图案在样品中被准确地“投射”和“再成像”,而盘面条纹的空间频率位于光学传递函数通带的中段。低频信息几乎不受像差影响,高频信息又容易被噪声淹没,因此他们设计了一个加权掩模,放大中高频段的功率,并滤除噪声水平以下的成分。指标直接在相机的原始图像(同时包含透射像和反射像)上计算,不需要先做切片重建。

研究校正了 5 种低阶像差:两种像散、两种彗差和一阶球差。作者报告,一轮校正约需 11 秒。

研究发现

1. 三档切片模式下都能校正。

Hussain 2022 Figure 4
图 2 果蝇幼虫神经肌肉接头样品,在低、中、高三档切片模式下校正前(Without AO)和校正后(With AO)的对比,成像深度约 10 µm,比例尺 10 µm。来源:原文 Figure 4。

在果蝇三龄幼虫神经肌肉接头(NMJ)样品中,校正前三档模式的图像对比度和分辨率都较差;校正后突触结(bouton)的轮廓和细节明显清晰。不同档位亮度不同,作者解释为切片越薄,层内包含的荧光标记越少。之后的实验都采用对像差更敏感的高切片档。

2. 不同深度都有改善。

Hussain 2022 Figure 5
图 3 同一 NMJ 样品在 10 µm、13.5 µm、26 µm 深度处校正前后的图像,比例尺 10 µm。来源:原文 Figure 5。

在 10、13.5 和 26 µm 三个深度,校正后的图像对比度和分辨率都有提升。作者也如实指出,越深信号越弱,即使校正后也是如此,可能与标记密度、残余像差以及组织吸收和散射有关。

3. 多通道 Z-stack 中能看清更多细节。

Hussain 2022 Figure 7
图 4 NMJ 样品 20 µm 厚 Z-stack 的强度投影图(MIP,maximum intensity projection),三通道成像:神经元(品红)、突触后致密区(黄)、细胞核(青)。中、下两行为局部放大,箭头所指的细节在校正后才可辨认。比例尺 10 µm。来源:原文 Figure 7。

作者在 Z-stack 中心做一次校正,然后采集 200 个 Z 位置。校正后,神经和突触的结构更清楚,单个圆形的突触后致密区可以分辨,而未校正图像中这些结构是模糊的。在果蝇卵室样品(36 µm Z-stack)中,校正后环管(ring canal)呈现出环状结构,而未校正时看起来像实心(原文 Figure 6)。

作者在一个通道(466 nm 激发)上完成校正,再用于其他通道,理由是样品折射率结构引起的像差对不同波长基本一致。

作者推测与展望

作者认为,这套 AO 方法应可推广到其他成像应用,从而扩展这类显微镜在深层组织成像中的能力;他们也提到,多轮校正在某些情况下可能带来进一步改善,校正耗时也有优化空间。这些属于作者的展望,论文中没有给出对应的实验数据。

局限

  • 论文展示的均为固定样品(BPAE 细胞、果蝇 NMJ、果蝇卵室),没有活体或活细胞的动态实验。

  • 改善效果主要通过图像对比和质量指标曲线(原文 Figure 8)呈现,正文没有给出分辨率或信噪比提升的具体倍数。

  • 只做了一轮校正,并且在单一位置、单一通道校正后用于整个 Z-stack 和其他通道;对于像差随位置变化明显的样品,效果可能不同。

  • AO 模块是实验室自建的光路,并非 Clarity 的标准配置;普通用户要复现,需要相应的光学搭建能力。

  • 利益声明:通讯作者 Martin Booth 声明与 Aurox Ltd 存在重大利益关系,致谢中也感谢了 Aurox 员工的技术帮助。读者应结合这一背景理解结论。

与 AUROX 产品的相关性

这项研究使用的是商品化的 AUROX Clarity 转盘共聚焦模块,用到了它的三档切片、宽场与共聚焦同时输出、LED 照明等特点。对 Clarity 用户来说,论文的意义在于两点:一是 Clarity 的光路可以与可变形镜等研究级光学部件组合,适合有方法学开发需求的光学实验室;二是论文对 Clarity 成像原理和像差影响的分析,可以帮助用户理解厚样品深处信号下降的原因。

产品要点:Clarity 通过标准 C 接口安装,带标准 C 接口的显微镜(包括正置机型)理论上都可以加装,覆盖 Leica、Nikon、Olympus/Evident、Zeiss 等品牌,具体型号请提前联系欧浩,与厂家确认适配方案。Clarity 标准版最高 50 fps,HS 版最高 100 fps;除 LED 外,也可以通过扩束器接入激光作为面光源;软件可选 AUROX Visionary 或 Visitron VisiView(VisiView 支持 Clarity)。

原文信息

  • 题名:Wavefront-sensorless adaptive optics with a laser-free spinning disk confocal microscope

  • 作者:Hussain SA, Kubo T, Hall N, Gala D, Hampson K, Parton R, Phillips MA, Wincott M, Fujita K, Davis I, Dobbie I, Booth MJ

  • 期刊:Journal of Microscopy,2022,288(2): 106–116(2020 年 11 月在线发表)

  • DOI:10.1111/jmi.12976

  • 许可:CC BY 4.0(文中图片引自原文,版权归原作者所有。原文 Figure 1 为“经 Aurox Ltd 许可修改,版权归 Aurox Ltd”,本文未使用该图)

本文为对原文的解读,非作者官方译文。


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AUROX 中文站:https://www.aurox.com.cn

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